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藥敏實驗的病原菌如何培養(yǎng)?

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樓主
發(fā)表于 2007-12-15 15:50:49 | 只看該作者 回帖獎勵 |倒序瀏覽 |閱讀模式
請大家?guī)蛶兔?!我對病原菌的培養(yǎng)不會!請幫助!:huahua:
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沙發(fā)
發(fā)表于 2009-7-7 14:36:50 | 只看該作者
是臨床上做藥敏嗎 直接那動物細菌多的地方涂到平皿上就可以了
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板凳
發(fā)表于 2009-7-31 11:03:36 | 只看該作者
用瓊脂培養(yǎng)基平皿培養(yǎng)!
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地毯
發(fā)表于 2009-10-9 18:28:20 | 只看該作者
培養(yǎng)基會做吧? 最簡單的辦法就是留肝 用肝在培養(yǎng)基上涂一層,之后放好藥敏片,放入恒溫箱,過6小時→OK

l24029789 于 2009-10-9 18:30 補充以下內容

如果你需要培養(yǎng)基的配方 可以留言
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5
發(fā)表于 2009-11-4 09:40:49 | 只看該作者
啥方?可以分享分享嗎?
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6
發(fā)表于 2009-11-17 17:59:12 | 只看該作者
體外抗菌藥物敏感試驗
一、抑菌試驗
試驗方法主要有定性測定的紙片瓊脂擴散法(disk agar diffusion tesk, Kirby-bauer tesk)、定量測定的稀釋法(dilution tist)和E試驗法(E-test)。
(一) 紙片瓊脂擴散法
1.基本原理   
將含有定量抗菌藥物的紙片貼在已接種待檢菌的瓊脂平板上,紙片中所含的藥物吸取瓊脂中的水分溶解后不斷地向紙片周圍區(qū)域擴散,形成遞減的梯度濃度,在紙片周圍抑菌濃度范圍內待檢菌的生長被抑制,從而產生透明的抑菌圈。抑菌圈的大小反映檢測菌對測定藥物的敏感程度,并與該藥對待檢菌的最低抑菌濃度(MIC)呈負相關,即抑菌圈愈大,MIC愈小。
2.試驗方法
⑴ 培養(yǎng)基的制備
普通營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基:可去生化試劑店購買。做不同細菌的藥敏試驗可選擇不同的培養(yǎng)基。
⑵ 藥敏片的制備
① 藥敏片的制備
取新華1號定性濾紙,用打孔機打成6毫米直徑的圓形小紙片。取圓紙片50片放入清潔干燥的青霉素空瓶中,瓶口以單層牛皮紙包扎。經15磅15-20分鐘高壓消毒后,放在37℃溫箱或烘箱中數天,使完全干燥。
    ② 抗菌藥紙片制作
在上述含有50片紙片的青霉素瓶內加入藥液0.25毫升,并翻動紙片,使各紙片充分浸透藥液,翻動紙片時不能將紙片搗爛。同時在瓶口上記錄藥物名稱,放37℃溫箱內過夜,干燥后即密蓋,如有條件可真空干燥。切勿受潮,置陰暗干燥處存放,有效期3-6個月。
    ⑶ 試驗方法
① 于純培養(yǎng)平板上,挑取相同的菌落4~5個(圖12-1a)。
② 接種于3~5ml水解酪蛋白(Mueller-Hinton,MH)肉湯中,經35℃培養(yǎng)6~8h(圖12-1b)。
③ 用無菌生理鹽水或MH肉湯校正菌液濁液,使其與標準比濁管的濃度相同(圖12-1c)。校正過的菌液(一般為0.5麥氏單位)在15min內接種完。
④ 用無菌棉拭蘸取校正過的菌液,在試管壁上擠壓幾次,壓去多余的菌液,涂布整個MH平板表面,反復數次,每次旋轉平板60°(圖12-1d),使整個平板涂均勻。
⑤ 涂布菌液的平板于室溫中干燥3~5min后,用紙片分配器或無菌鑷子取藥敏紙片,貼于平板表面,并用鑷子輕壓一下紙片,使其貼平。每張紙片的間距不小于24mm,紙片的中心距平板的邊緣不小于15mm,90mm直徑的平板宜貼6張藥敏紙片(圖12-1e)。(6)將貼好紙片的平板置35℃培養(yǎng)18~24h后,用標尺量取抑菌圈直徑(圖12-1f)。
3.結果判斷 
根據抑菌圈的大?。ú煌股仄湟志Υ笮〉臉藴什灰恢拢?,判斷為敏感(S)、耐藥(R)或中度敏感(I)。某些細菌可蔓延生長至某種抗生素的抑菌圈內,如磺胺抑菌圈內可能有微量的細菌生長,可忽略不計,應以外圈為準。
   
(a)                                             (b)                          (c)
   
(d)                                  (e)                             (f)
圖12-1  Kirby-Bauer法試驗程序
(a)挑取菌落(b)轉種肉湯(c)比濁(d)涂布平板上(e)放置藥敏紙片(f)量取抑菌圈大小
(二)試管稀釋法
即最低(或最?。┮志鷿舛龋╩inimal inhibitory concentration,MIC)的測定。
1.基本原理 
在肉湯中將抗菌藥物進行一系列(對倍)稀釋后,定量接種待檢菌,35℃培養(yǎng)24h后觀察,抑制待檢菌肉眼可見生長的最低藥物濃度,即為該藥物對待檢菌的最低抑菌濃度。
2.試驗方法 
取無菌試管26支,排成兩排。另取3支試管,分別作為肉湯對照管、待檢菌生長對照管和質控菌生長對照管。每管加入MH肉湯2ml,在第1管加入經MH肉湯稀釋的藥物原液(256mg/L)2ml混勻,然后吸取2ml至管2管,混勻后再吸取2ml至第3管。如此連續(xù)對倍稀釋至第13管,并從第13管中吸取2ml棄去。此時各管含藥濃度依次為128、64、32、8、4、2、1、0.5、0.25、0.125、0.0625、0.03125mg/L。第1排試管每管加入待檢菌菌液(1×107菌落形成單位(CFU)/ml)0.1ml,第2排試管每管加入標準菌菌液(1×107菌落形單位(CFU)/ml)0.1ml,最終接種菌量約為5×105 CFU/ml。置35℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)18~24h。觀察有無細菌生長。
3.結果判斷 
藥物最低濃度管無細菌生長者(對照管細菌生長良好),即為待檢菌的最低抑菌濃度(MIC)。(圖 12-2)

圖12-2  MIC測定的試驗結果
左起第四管為藥物最低濃度而無細菌生長,即待檢菌的MIC。
(三)E試驗法
1.基本原理 
該方法結合擴散法和稀釋法的原理和特點,操作簡便如擴散法,但可以同稀釋法一樣直接定量測出藥物對待檢菌的MIC。其試條為商品化塑料試條,長50mm,寬5mm,內含干化、穩(wěn)定、濃度由高至低呈指數梯度分布的某種抗菌藥物??捎糜诟鞣N常見菌、微需氧菌、分枝桿菌、厭氧菌和真菌等的藥敏試驗。酵母菌和霉菌的藥敏試驗是一項新的技術,由于影響因素較多,直接藥敏試驗為困難,E試驗法由于結果準確、穩(wěn)定,受到認同。
2.試驗方法 
菌液、平板接種等同紙片瓊脂擴散法(厭氧菌、隱球菌和其他菌懸液濃度為1個麥氏單位,其他細菌為0.5個麥氏單位)。將E-test試條輕放在接種、干燥后的瓊脂平板上(90mm平板放置1~2條),置一定條件下培養(yǎng):厭氧菌置厭氧環(huán)境培養(yǎng)48h,微需菌置5%~10%二氧化碳環(huán)境培養(yǎng)24~48h,隱球菌培養(yǎng)48~72h,其他細菌培養(yǎng)24h。
3.結果判斷 
培養(yǎng)后圍繞著試條可形成一個卵圓形的抑菌圈,抑菌圈與試條的橫向相交處的讀數刻度,即是該抗菌藥物對待檢菌的MIC。(圖12-3,圖12-4)

圖12-3  E試驗示意圖

圖12-4 E試驗法的試驗結果
(a)常見菌的試驗結果(b)苛養(yǎng)菌的試驗結果(c)厭氧菌的試驗結果(d)酵母菌的試驗結果(e)真菌的試驗結果
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發(fā)表于 2010-1-18 22:59:17 | 只看該作者
一般用營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)就可以。
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